Coccoidea

cocciniglie

Coccoidea Dactylopius coccus Classificazione

Regno	Animalia
Ramo	artropodi
Sub-emb.	Esapoda
Classe	insetti
sottoclasse	Pterigoti
Infra-classe	Neoptera
Super ordine	Endopterigoti
Ordine	emittera
Sotto-ordine	Sternorrincha

Famiglia fantastica

Coccoidea
Handlirsch , 1903 Cocciniglia su un albero di limone e il suo ovisac . merlato

Le cocciniglie ( Coccoidea ) formano una superfamiglia di insetti Hemiptera del sottordine di Sternorrhyncha .

Ci sono quasi 8.500  specie raggruppate in 21-24 famiglie. Vivono in un'ampia varietà di habitat; dalle tundre (circa 2000 specie conosciute nella zona paleartica) all'equatore . Questi insetti erano precedentemente chiamati " pidocchi delle piante  " a causa del loro apparato boccale trasformato in un rostro urticante che permetteva loro di succhiare la linfa , sia la linfa sviluppata per alcuni gruppi, aspirata nel floema , sia la linfa grezza prelevata dal corpo xilema , mentre un poche specie aspirano fluido dal parenchima cellulare. Coloro che vivono nei tropici caldi sono più grandi di quelli nelle zone temperate. Le femmine di solito producono una grande quantità di secrezioni tegumentarie (cere o lacche) che le proteggono e talvolta le ricoprono completamente.

I Coccoidea si nutrono di un'ampia varietà di piante , quindi la maggior parte di esse sono considerate parassiti .

Le cocciniglie sono insetti comuni, o sono diventati comuni, o addirittura localmente invasivi , ma la cui ecologia rimane poco conosciuta.

Storia evolutiva

Nella storia dell'evoluzione , le cocciniglie sembrano apparire intorno alla metà del Mesozoico (140 milioni di anni fa). Probabilmente facevano parte della fauna dei rifiuti e si presume che mangiassero miceli . Alcuni gruppi di margarodidi (insetti da 10 a 15  mm ) erano già diversi nel Cretaceo inferiore (-100 milioni di anni fa). Le cocciniglie sono diventate parassiti delle piante da fiore co-evolvendo con alcune di esse. Spesso le cocciniglie hanno sviluppato relazioni mutualistiche con le formiche, oltre che con microrganismi che sono diventati loro simbionti e producono per loro sostanze azotate essenziali. Le inclusioni di ambra del Terziario ( Eocene , Oligocene e Miocene ) (-55 milioni di anni fa) hanno conservato rappresentanti di quasi tutti i gruppi esistenti oggi.

Classificazione

La superfamiglia della cocciniglia (Coccoidea), comprende gli emitteri del sottordine Sternorrhyncha . È un gruppo monofiletico , uno dei 4 gruppi fratelli di Sternorrhynchus (gli altri 3 sono afidi (Aphidoidea), mosche bianche (Aleyrodoidea) e psillidi (Psylloidea).

Descrizione

Le cocciniglie sono tutti parassiti delle piante , con forte dimorfismo sessuale . Il maschio adulto è un insetto alato con un solo paio di ali anteriori. Le sue ali posteriori sono ridotte a strutture chiamate hamulo-manubri , antenne e zampe sviluppate ( tarsi uniarticolati). Non ha apparato boccale e vive solo uno o due giorni, il tempo di riprodursi. Nella maggior parte delle famiglie di cocciniglie, la femmina è priva di ali , di aspetto neotenico e può avere antenne e zampe ridotte (molte vivono attaccate alle piante). La femmina assomiglia ad un guscio simile a una larva , a fiele o ricoperto di cera, mentre altre famiglie come i Diaspididae possono avere una perdita totale delle zampe nella femmina adulta, che rimane completamente attaccata alla pianta.

Nelle zone temperate misurano al massimo solo pochi mm, ma le specie del genere Callipappus raggiungono i 40  mm di lunghezza. In Africa Aspidoproctus maximus (Lounsbury, 1908) misura fino a 35  mm di lunghezza e 20  mm di larghezza.

Alcune cocciniglie secernono un materiale dall'aspetto cotonoso costituito da sottili filamenti cerosi o scaglie cerose. Alcune specie hanno saliva tossica: quando la pianta è parassitata da un gran numero di cocciniglie, sulle foglie possono comparire delle macchie nere corrispondenti a tossine che si accumulano creando una piccola lesione. La foglia alla fine cade, si accartoccia, diventa gialla o necrosi, a seconda della specie.

Per alcune specie molto piccole (difficili da osservare e notare sulla pianta), la loro presenza si rileva a livello delle giovani foglie: le cocciniglie si attaccano alla giovane foglia emergente, sfruttando un costante afflusso di linfa, e' un materiale più morbido, quindi più facile da perforare. La conseguenza è un sottosviluppo della nuova foglia alla puntura. Tutt'intorno, la foglia è molto meno sviluppata e può apparire leggermente deforme, a causa dell'asimmetria causata dalla locale mancanza di linfa . Possiamo verificare se si tratta effettivamente di cocciniglie lasciando la foglia sulla pianta, per qualche giorno o qualche settimana, a seconda della velocità di sviluppo della pianta: l'insetto si nutrirà quasi continuamente, producendo il suo scudo di cera: questo risulterà in uno strato sottile (di solito marrone chiaro) presente tutto intorno alla tacca. Raschiando delicatamente, rimuoviamo tutto questo piccolo piatto sottile in un colpo solo, a meno che non ce ne siano due molto vicini l'uno all'altro. Con un'ottima lente d'ingrandimento o un piccolo microscopio amatoriale, osservando la parte della lamina attaccata alla foglia, troviamo vicino al suo centro le membra dell'insetto che gli hanno permesso di rimanere saldamente attaccato alla pianta.

Riproduzione e ciclo di vita

Il sistema riproduttivo all'interno di questo gruppo è molto eterogeneo.

Le cocciniglie sono quasi sempre ovipare ma alcune specie sono ovovivipare (le uova deposte sono già embrionate ), altre sono vivipare .

L' ermafroditismo è possibile, ad esempio in alcune specie di Icerya ( Monophlebidés ) in queste specie, la Cocciniglia australiana , ogni individuo porta organi riproduttivi sia maschili che femminili. L'ovulo fecondato produce un ermafrodita, e quello che sfugge all'autofecondazione (fenomeno raro) produrrà per partenogenesi arrenotoque un maschio alato. Conosciamo anche almeno sette forme di partenogenesi nelle cocciniglie . Molte di queste modalità di riproduzione possono coesistere all'interno di una singola specie, producendo così linee sia partenogenetiche che bisessuali. È il caso della Francia, ad esempio, della Lecanina del corniolo , della Lecanina della vite , del Pidocchio delle Esperidi o della virgola della cocciniglia del melo .

La partenogenesi consiste nello sviluppo di uova non fecondate; può essere di tre tipi:

• tipo thelytoch  : uova non fecondate producono solo femmine; questo è ancora il caso in alcuni Diaspididae e Margarodidae  ;
• tipo facoltativo  : uova non fecondate producono femmine, ma la riproduzione bisessuale si traduce in individui di entrambi i sessi;
• tipo arrhenotoque  : dall'uovo non fecondato emergono solo i maschi.

La fecondazione  : la nascita, i maschi sessualmente maturi alla ricerca delle femmine, guidati dai loro feromoni . Si accoppiano in pochi minuti - sulla stessa femmina si possono osservare diversi maschi che si accoppiano uno dopo l'altro -.

Le cocciniglie passano attraverso tre fasi principali di sviluppo:

• l'uovo;
• la larva femmina è mobile, eruciforme , con tre o quattro stadi larvali: L1, L2 e L3 ed eventualmente L4; la femmina ha uno sviluppo post-embrionale cosiddetto parametabolico  : senza metamorfosi, con larve più o meno somiglianti ad adulti in miniatura, sia per la loro forma che per il loro modo di vivere;
• il maschio passa attraverso cinque fasi; 1 st e 2 ° larvali stadi, poi “pre-pupa”, “ ninfa  ” e per adulti stadi  . A differenza della femmina, il maschio sperimenta uno sviluppo olometabolico post-embrionale  ;
• l'adulto: la femmina, il più delle volte attaccata, depone numerose uova piccolissime, deposte sotto o dietro di lei, in un tampone di cera bianca.

Il numero di generazioni annue varia a seconda della specie e del clima. La specie si dice univoltina quando produce una sola generazione all'anno e bi-, tri- o polivoltina quando ne produce diverse.

La fertilità differisce tra specie e contesti, come il tasso di parassitismo;

• I Parlatoria (diaspididi) depongono da 15 a 20 uova per femmina.
• Al contrario, l' Eulecanium e la Saissetia (come la cocciniglia nera dell'olivo) depongono fino a 2000 uova per femmina, ma l' Aspidoproctus ( monophlebidae ) può deporre 3 volte di più (fino a circa 6000).

Mobilità

Il maschio è alato e vola. Allo stato adulto, la femmina non è mobile, tranne che negli Pseudococcidae , e si nutre attaccandosi ai fusti o alle foglie di alcune piante da cui succhia la linfa. Alcune famiglie possono avere cocciniglie femmine con appendici sviluppate come negli Ortheziidae , mentre altre famiglie come i diaspididi possono avere una completa scomparsa delle zampe nella femmina adulta, per rimanere completamente attaccati alla pianta.

È allo stadio di ninfa che questo animale si disperde e colonizza nuovi alberi, altre piante o nuove parti della sua pianta ospite. Alcune larve 1 ° stadio attivamente muoversi (è il caso ad esempio di bianco data cocciniglia di palma ( Parlatoria blanchardi Targioni Tozzetti, 1868 ). Alcuni sono trasportare dal vento o trasportati dalle formiche si avvicinano al loro colonie per raccogliere la loro melata . Alla secondo stadio, in alcune famiglie come Coccidae e Kermesidae , le larve si insediano stabilmente, fino alla morte ad esempio per le femmine diaspidi, o fino alla muta immaginaria per il maschio.Molte specie sono ancora mobili nel secondo stadio.In alcune famiglie (come pseudococcidae o ortheziidae ), la femmina rimane mobile per tutta la vita.

Meccanismi di coping, difesa e protezione

Sono numerosi, e probabilmente ancora imperfettamente compresi:

• Alcune specie hanno sviluppato simbiosi con le formiche che le difendono in cambio della loro melata.
• Gli scudi, che a volte svolgono un ruolo di mimetizzazione, e le protezioni cerose li proteggono da alcuni predatori e dalla disidratazione
• Le femmine si posizionano su parti delle piante dove sono meglio nascoste, o dove possono beneficiare del deflusso dell'acqua piovana.
• Alcuni generi ( Kuwania , Xylococcus , Matsucoccus compreso il Pino marittimo Cocciniglia ) si proteggono nella pianta (sotto la corteccia , nelle guaine fogliari o nei nodi delle graminacee o su radici invisibili.
• Gli Eriococcidés si proteggono in una borsa che costruiscono man mano che crescono. Diaspines scalabili insetti riciclare loro exuvia nel loro scudo protettivo, fatto di secrezioni cementate da fluido anale.
• Le larve di alcune specie ipogee (della famiglia dei Margarodidae ) possono, in caso di stress idrico, ritardare la loro muta immaginaria , proteggersi sotto un test di impermeabilità che sviluppano mediante le loro secrezioni, per sopravvivere lì mentre ritornano le condizioni esterne. più indulgente.
• Esistono varie strategie per proteggere le uova e le giovani larve. Questi sono gli ovisac forti e strutturati della Cocciniglia australiana o Pulvinaria , o stuoie di filamenti cerosi impigliati dalla femmina ''Porphyrophora'' . In Ortheziidae , le femmine mobili portano il loro ovisac. Femmine di altre specie ( Kermesidae e molti Coccidae ) proteggono le loro uova sotto il loro scudo o sotto i loro corpi. In Australia , le femmine del genere Callipappus generano una sacca “marsupiale” invaginando i loro segmenti addominali posteriori e depongono le uova direttamente lì. Le giovani larve cresceranno lì. Il genere Apiomorpha crea galle sugli eucalipti ( tumori cavi della pianta causati in particolare dall'iniezione di saliva) e le larve vi si sviluppano protette dai loro predatori.

Parassitismo

Sono parassiti che raramente uccidono i loro ospiti, ma possono indebolirli e causare problemi in agricoltura, orticoltura, silvicoltura e frutteti. In Francia, circa 110 specie sono occasionalmente dannose e alcune specie sono considerate parassiti (si tratta principalmente di diaspidi, coccidi, pseudococchi o margarodidi).

• Alcune infestazioni di alberi, ramoscelli e foglie da parte di cocciniglie stanno diventando caratteristiche di ambienti urbani o fortemente antropizzati. A volte si trovano anche sopra o sotto oggetti adiacenti (es: le collane che legano l'albero ai pali).
• Quando sono numerosi sulle foglie o sui fusti, questi insetti possono provocare scompiglio sugli alberi da frutto e in particolare sui meli .
• La cocciniglia del pino marittimo potrebbe essere stata favorita dalle monocolture di pino e dal declino dei suoi predatori (es. l'insetto Elatophilus nigricornis Zetterstedt è un antocoride predatore specializzato in questa specie, utilizzato nella lotta integrata). Ha ucciso pini marittimi su circa 120.000  ettari nel Var e nelle Alpi Marittime e colonizza la Corsica.
• Il polifago di Pou San Jose indebolisce alberi e cespugli di bacche.
• La cocciniglia del gelso attacca le pesche del frutteto e il ribes nero . Può essere combattuto con il controllo biologico con uno dei suoi predatori (Imenotteri endoparassiti), Encarsia berlesei (Howard) , nonché con l'imenottero ectoparassita Aphytis proclia (Walker) o una piccola coccinella Rhizobius satelles (Blaisdell) .
• Antonina graminis attacca le erbe erbacee e può produrre macchie gialle nei campi da golf.
• Sulla vite si osservano dieci specie, alcune delle quali diventano talvolta localmente e momentaneamente infestanti: Cotonosa della vite ( Pulvinaria vitis L . ), Acero friabile ( Neopulvinaria innumerabilis (Rathvon) lécanine del corniolo ( Parthenolecanium corni , Bouché), cocciniglia del limoni ( Planococcus citri , Risso), con perdite significative in caso di focolai di grandi dimensioni, possono trasmettere malattie tra cui i "virus del rotolo di foglie" della vite (trasmessi secondo l' INRA dalla cocciniglia bohémien ( Heliococcus bohemicus ), cocciniglia del platano ( Phenacoccus aceris ) e lecanina di corniolo ( Parthenolecanium corni , Bouché ).

Per le infestazioni molto locali, le alternative ai pesticidi tossici sono la pulizia con acqua pressurizzata, spruzzando una soluzione di sapone nero con alcol denaturato all'1  % o un po' di olio di soia . Favorire la presenza e la sopravvivenza delle coccinelle selvatiche, dei sirfidi e delle loro larve, oltre a una grande ricchezza di insetti e uccelli - soprattutto quelli che si nutrono delle formiche che proteggono afidi e cocciniglie - aiuta anche a prevenire le epidemie.

Divisione

Le introduzioni umane e la globalizzazione del commercio delle piante hanno modificato la distribuzione di alcune specie. Ad esempio, in Sicilia sono state censite 159 specie , di cui almeno la metà sono parassiti di colture di recente introduzione. In Italia sono 343. I più noti sono quelli che parassitano le specie coltivate.

Sono noti per avere una bassa mobilità e quindi hanno un basso rischio di diffusione. Sono comunque in piena espansione in Europa, in particolare sugli alberi urbani stressati dall'inquinamento o dal contesto urbano e magari tramite il trasporto di piante parassitate. Le piccole larve sembrano poter essere trasportate dal vento.

Pullulazioni

Le epidemie di cocciniglia al di fuori del loro ambiente naturale, in particolare nei climi urbani e periurbani, sono sempre più frequenti, in tutti i continenti, e sono poco conosciute. Diversi fattori sembrano essere in grado di favorirli, che vanno da una minore difesa dell'albero o della pianta parassitata in seguito alla mancanza di acqua, all'esposizione a determinati inquinanti urbani o alla presenza di una coppia termoigrometrica innaturale. Una spiegazione essenziale sembra essere la regressione o la scomparsa dei loro predatori naturali (soprattutto in città); con in particolare:

• alcune specie di coccinelle e le loro larve,
• larve di Syrphidae ,
• Pyralidae bruchi ,
• micro- imenotteri ( Chalcidiens e Braconidae ) che parassitare e controllo mealybugs in natura.

Questi predatori naturali di cocciniglie sembrano in notevole regressione e spesso localmente sono scomparsi. L'aumento generale del tasso di pesticidi e di alcuni inquinanti nell'aria, piogge, nebbie o rugiade potrebbe essere in parte responsabile della scomparsa di questi predatori.

Nemici naturali

I loro principali nemici (vedi sopra), comprese alcune specie di coccinelle predatrici e microimenotteri parassiti, sembrano essere in netto declino.

È noto che alcune vespe o formiche le risparmiano e consumano la loro melata , ma vari imenotteri tra cui Metaphycus helvolus o Metaphycus lounsburyi parassitano gli stadi larvali o negli adulti. La mosca Diversinervus elegans parassita adulti o larve. Alcuni predatori di questo insetto sono stati utilizzati nella lotta biologica, tra cui Chilicorus renipustulatus e Chilicorus nigritus , due piccole coccinelle che si nutrono di varie specie di cocciniglie ( diaspine e lecanine ).

Patogenicità

Come tutti gli insetti succhiatori mordaci, queste specie (soprattutto introdotte) sono potenzialmente pericolose per le piante, a causa della puntura della linfa, del rilascio di melata che può causare muffe fuligginose e dei virus a cui possono contribuire. o dei tessuti che perforano, ma anche per l'assenza di predatori specifici nel paese ospitante.

Si ritiene che larve o uova o individui adulti vengano introdotti frequentemente altrove rispetto alla loro zona di origine con il trasporto a lunga distanza di piante verdi, piante in vaso, alberi da vivaio, frutta e verdura. Ad esempio, una cocciniglia precedentemente sconosciuta in Europa, Ripersiella hibisci, è stata identificata in piante di Callistemon in vaso provenienti dall'Italia, vendute in Svizzera nella primavera del 2021.

Trattamenti orticoli

Lo scudo o le fibre cerose che proteggono questi insetti e le loro uova li rendono meno vulnerabili ai pesticidi esterni. Le soluzioni acquose scivolano su di esse se non vengono aggiunti agenti bagnanti (sapone nero, detersivo per piatti, ecc.).

Gli oli insetticidi (olio bianco) sono spesso usati in modo più efficace nel trattamento invernale.

Un altro mezzo efficace (ma favorendo la comparsa di forme resistenti) è l'uso di pesticidi sistemici (sostanze che penetrano nella pianta e avvelenano l' insetto succhiatore attraverso la linfa, in tutte le parti della pianta, comprese le radici. uova, è necessario rielaborare da una settimana a dieci giorni dopo contro le larve nel frattempo schiuse. Lo svantaggio di questa soluzione è che può avvelenare anche i predatori naturali delle cocciniglie.

È necessario trattare tutte le piante interessate e in caso di recidiva esaminare le possibili fonti di ricontaminazione comprese alcune erbe infestanti .

In giardinaggio, a seconda della gravità, delle specie da proteggere e dei tipi di cocciniglia, si possono utilizzare metodi diversi.

Interesse economico o culinario

Alcune specie hanno svolto un ruolo economico, che è diminuito dall'invenzione delle sostanze sintetiche.

Le cocciniglie possono essere utilizzate per produrre:

• di lacche come la gommalacca derivata dalla specie Kerria lacca che parassita giuggiola ( Zizyphus mauritiana ), il kussam ( Schleichera oleosa ), il palas ( Butea monosperma ), il ghont ( Zizyphus xyloporus ) o ficus religiosa ( Ficus religiosa ). Il suo estratto viene utilizzato per realizzare confetti farmaceutici, la copertura di alcuni cioccolatini "che non si sciolgono in mano" e anticamente tra le prime materie plastiche (primi dischi a 78 giri);
• di carminio o rosso scarlatto prodotto fin dall'antichità dalla cocciniglia Kermes vermilio chiamato Kermes dyers o "semi scarlatto" che vive sulla quercia Kermes in Spagna e intorno al Mediterraneo. Il materiale colorante è costituito da acido kermesic (tipo di pigmento antrachinone , e laccaïque acido abbiamo rilevato in mummie egiziane e anche in alcune pitture preistoriche. Questo colorante è stato utilizzato come rimedio al XVIII °  secolo (astringente per le ferite, gli occhi decongestionante). Filippo Silvestri anche convinto che questo estratto di cocciniglia era confectio Alkermes , il farmaco più prescritto l' VIII ° e IX tH  secoli. l' Alkermes è una bevanda italiana ha reso ancora con questo cocciniglia.
• In Centro e Sud America ( Messico , Perù ), da Dactylopius coccus (Costa, 1835), nutrito con il fico d'India ( Opuntia ficus-indica ), si ricava dall'acido carminico puro ( antrachinone resistente ai lavaggi ) un carminio rosso cremisi . 70.000 cocciniglie producono 500  grammi di carminio.
  È stato usato per tingere tessuti, pelle, ceramica o come colorante alimentare, almeno dal400 aC J.-C.. Gli invasori spagnoli segretamente allevati questi cocciniglie, tra gli altri, a Malaga , e già nel 1626 nelle isole Canarie in "nopaleries". Anche la cocciniglia polacca e la cocciniglia armena producono un colorante rosso.
  I coloranti chimici sintetici hanno gareggiato con questa produzione dal 1850, ma ha continuato in Perù come colorante alimentare o per l' istologia ("carminio n ° 40 per l'istologia").
• Gli Aztechi , gli Inca e i Maya estraevano un rosso carminio e un aje da insetti di grandi dimensioni lunghi 2  cm . Aje è una secrezione gialla, grassa e impermeabilizzante prodotta da Llaveia axin (Llave). Era anche usato come base per dipinti (anche sul viso). Ceramiche, barche, legno o zucche erano impermeabilizzate con aje. Infine, aje era anche un rimedio per la diarrea e un antidolorifico per la gotta . In quota proteggeva la pelle dal congelamento e dalle screpolature.
• La manna , citata nella Bibbia , che avrebbe nutrito gli ebrei durante la loro traversata del deserto potrebbe essere stata la melata cristallizzata di una cocciniglia, forse Trabutina mannipara (Hemprich & Ehrenberg, 1829), una pseudococcina che vive sulla tamerici ( Tamarix sp . ) nelle montagne del Sinai - potrebbero essere anche colonie di batteri del tipo nostoc  -. La cocciniglia, essendo un insetto, non è un alimento autorizzato nell'ebraismo secondo la Bibbia , ma la melata è una produzione animale e non della carne, come per il miele che per essa è kosher .
• Gli aborigeni australiani mangiano galle di eucalipto e gli apiomorfi che contengono come prelibatezze. Nel sud-est asiatico si mangiano i monoflebini (insetti di grandi dimensioni).

Tassonomia

Taxa inferiori: famiglie  :

• Aclerididae
• Asterolecaniidae
• Beesoniidae
• Carayonemidae
• Cerococcuda
• Coccidi
• Conchaspididae
• Dactylopiidae
• Diaspididi
• Elettrococcidi
• Eriococcidi
• Grimaldiellidi
• Halimococcidae
• Inkaidae
• Jersicoccidae
• Kermesidae
• Kerriidae
• Kukaspididae
• Labiococcidi
• Lecanodiaspididi
• Margarodidae
• Micrococcidi
• Ortheziidae
• Fenacoleachiidae
• Fenicococcidi
• Pseudococcidi
• Putoidae
• Stictococcidae

Tre tipi principali di cocciniglie

Quelli che hanno un corpo morbido, senza scudo protettivo.
Si proteggono sotto filamenti cerosi. Pseudococcidi e Margarodidi: Esempi: Cocciniglia della serra ( Pseudococcus adonidum ) Cocciniglia australiana ( Icerya purchasi ) Quelli che hanno un corpo indurito per impregnazione di cera o lacca (lecanins o lécanies, della famiglia Lecanidae, precedentemente). Ora le cocciniglie di questa famiglia sono chiamate Coccidi. Esempi: Squama di corniolo ( Parthenolecanium corni ) Cocciniglia della pesca ( Eulecanium persicae ) Cocciniglia della serra ( Saissetia hemisphaerica ) Squama di olivo ( Saissetia oleae ) Cocciniglia soffice della vite ( Pulvinaria vitis ) Quercia lecania ( Parthenolecanium quercifex ) Lecania di Fletcher ( Parthenolecanium fletcheri ) Vite lecania ( Parthenolecanium corni ) Coloro che hanno un corpo morbido, ricoperto da un abaco protettivo ceroso (Diaspididae) la cui forma ricorda un minuscolo guscio di ostrica. Esempi: Pidocchio di San José ( Diaspidiotus perniciosus ) Scaglia di pomacee ( Diaspidiotus piri e D. ostraeiformis ) Scala della virgola della mela ( Lepidosaphes ulmi ) Cocciniglia della pera ( Epidiaspis leperii ) Pidocchio arancione ( Chrysomphalus aonidum e C. dictyospermi ) Cocciniglia nera degli agrumi ( Parlatoria zizyphii ), Cocciniglia degli agrumi ( Lepidosaphes citricola e L. gloweri ) Squama di gelso ( Pseudaulascaspis pentagona )

Esempi di specie

Famiglia Ortheziidae

• Orthezia urticae (Linnaeus, 1758)

Famiglia Margarodidae

• Guerriniella serratulae (Fabricius, 1775)
• Icerya purchasi (Maskell, 1879)
• Matsucoccus pini (Verde, 1925)
• Neomargarodes europaeus (Goidanich, 1969)
• Porfirofora italica (Goidanich, 1963)

Famiglia Pseudococcidi

• Asphodelococcus asphodeli (Bodenheimer, 1927)
• Balanococcus santilongoi (Mazzeo, 1996)
• Chaetococcus phragmitis (Marchal, 1909)
• Delottococcus euphorbiae (Ezzat & McConnell, 1956)
• Dysmicoccus brevipes (Cockerell, 1893)
• Dysmicoccus neobrevipes (Beardsley, 1959)
• Dysmicoccus pietroi (Marotta, 1992)
• Euripersia tomlini (Newstead, 1892)
• Hypogeococcus pungens (Granara de Willink, 1981)
• Nipaecoccus nipae (Maskell, 1893)
• Peliococcus cycliger (Leonardi, 1908)
• Peliococcus vivarensis Tranfaglia, 1981
• Phenacoccus aceris (Signoret, 1875)
• Phenacoccus graminicola (Leonardi, 1908)
• Phenacoccus interruptus (Verde, 1923)
• Phenacoccus madeirensis (Verde, 1923)
• Phenacoccus mespili (Signoret, 1875)
• Phenacoccus neohordei (Marotta, 1992)
• Phenacoccus silvanae (Longo & Russo, 1989)
• Phenacoccus yerushalmi (Ben-Dov, 1985)
• Planococcus citri (Risso, 1813)
• Planococcus ficus (Signoret, 1875)
• Pseudococcus affinis (Maskell, 1894)
• Pseudococcus calceolariae (Maskell, 1878)
• Pseudococcus longispinus (Targioni Tozzetti, 1867)
• Puto Palinuri (Marotta e Tranfaglia, 1993)
• Puto superbus (Leonardi, 1907)
• Puto tauricus (Borchsenius, 1948)
• Rhizoecus cacticans (Hambleton, 1946)
• Rhizoecus falcifer (Kunckel d'Herculais, 1878)
• Rhizoecus lelloi (Mazzeo, 1996)
• Spilococcus mammillariae (Bouché, 1844)
• Spinococcus multispinus (Siraiwa, 1939)
• Trionymus perrisii (Signoret, 1875)
• Trionimo tomlini (Verde, 1925)
• Vryburgia rimariae (Tranfaglia, 1981)

Famiglia Eriococcidi

• Acanthococcus araucariae (Maskell, 1879)
• Acanthococcus cactearum (Leonardi, 1908)
• Acanthococcus coccineus (Cockerell, 1894)
• Acanthococcus cynodontis (Kiritchenko, 1940)
• Acanthococcus devoniensis (Verde, 1896)
• Acanthococcus rosannae (Tranfaglia & Esposito, 1985)
• Ovaticoccus agavium (Douglass, 1888)
• Rhizococcus insignis (Newstead, 1891)

famiglia dei Criptococcidi

• Cryptococcus fagisuga Lindinger , 1936

Famiglia dei Micrococcidi

• Micrococcus silvestrii Leonardi, 1907

famiglia Kermesidae

• Kermes bacciformis (Leonardi, 1908)
• Kermes gibboso (Signoret, 1875)
• Kermes roboris (Fourcroy, 1785)
• Kermes vermiglio (Planchon, 1864)
• Nidularia pulvinata (Planchon, 1864)

famiglia dei Cerococcudi

• Pollinia pollini (Costa, 1857)

Famiglia Coccidi

• Ceroplastes rusci (Linnaeus, 1758)
• Ceroplastes sinensis (Del Guercio, 1900)
• Coccus hesperidum (Linnaeus, 1758)
• Coccus pseudomagnoliarum (Kuwana, 1914)
• Eucalymnatus tessellatus (Signoret, 1873)
• Eulecanium tiliae (Linnaeus, 1758)
• Filippia follicularis (Targioni Tozzetti, 1867)
• Lecanopsis formicarum (Newstead, 1893)
• Lichtensia viburni (Signoret, 1873)
• Nemolecanium graniformis (Wünn, 1921)
• Parthenolecanium corni (Bouché, 1844)
• Parthenolecanium persicae (Fabricius, 1776)
• Parthenolecanium rufulum (Cockerell, 1903)
• Pulvinara mesembryanthemi (Vallot, 1830)
• Pulvinaria floccifera (Westwood, 1870)
• Pulvinaria vitis (Linnaeus, 1758)
• Rhizopulvinaria grassei (Balachowsky, 1936)
• Saissetia coffeae (Walker, 1852)
• Saissetia oleae (Olivier, 1791)
• Scythia aetnensis Russo & Longo, 1990

Famiglia Aclerididae

• Aclerda berlesei (Buffa, 1897)

Famiglia degli Asterolecaniidae

• Asterodiaspis bella (Russell, 1941)
• Asterodiaspis ilicicola (Targioni Tozzetti, 1888)
• Asterodiaspis roboris (Russell, 1941)
• Bambusaspis bambusae (Boisduval, 1869)
• Planchonia zanthenes (Russell, 1941)

Famiglia dei Fenicococcidi

• Phoenicococcus marlatti Cockerell, 1899

famiglia dei Diaspidi

• Abgrallaspis cyanophylli (Signoret, 1869)
• Acanthomytilus intermittens (Hall, 1924)
• Acanthomytilus sacchari (Sala, 1923)
• Aonidia lauri (Bouché, 1833)
• Aonidiella aurantii (Maskell, 1879)
• Aonidiella taxus (Leonardi, 1906)
• Aspidiotus hedericola (Leonardi, 1920)
• Aspidiotus nerii (Bouché, 1933)
• Aspidiotus spinosus (Comstock, 1883)
• Aulacaspis rosae (Bouché, 1833)
• Carulaspis carueli (Signoret, 1869)
• Carulaspis juniperi (Bouché, 1851)
• Carulaspis silvestrii Lupo, 1966
• Carulaspis visci (Schrank, 1781)
• Chionaspis pinifoliae (Fitch…)
• Chionaspis salicis (Linnaeus, 1758)
• Chrysomphalus aonidum (Linnaeus, 1758)
• Chrysomphalus dictyospermi (Morgan, 1889)
• Diaspidiotus distintius (Leonardi, 1900)
• Diaspidiotus osborni (Newell & Cockerell, 1898)
• Diaspidiotus viticola (Leonardi, 1913)
• Diaspis boisduvalii (Signoret, 1869)
• Diaspis bromeliae (Kerner, 1778)
• Diaspis coccois (Lichtenstein, 1882)
• Diaspis echinocacti (Bouché, 1833)
• Duplachionaspis berlesei (Leonardi, 1898)
• Duplachionaspis sicula (Lupo, 1938)
• Dynaspidiotus britannicus (Newstead, 1898)
• Epidiaspis gennadii (Leonardi, 1898)
• Epidiaspis leperii (Signoret, 1869)
• Evallaspis ampelodesmae (Newstead, 1897)
• Fiorinia fioriniae (Targioni Tozzetti, 1867)
• Furchadaspis zamiae (Morgan, 1890)
• Gonaspidiotus minimus (Leonardi, 1896)
• Hemiberlesia lataniae (Signoret, 1869)
• Emiberlesia rapax (Comstock, 1881)
• Howardia biclavis (Comstock, 1883)
• Ischnaspis longirostris (Signoret, 1882)
• Lepidosaphes beckii (Newmann, 1869)
• Lepidosaphes conchiformis (Gmelin, 1789)
• Lepidosaphes destefanii (Leonardi, 1907)
• Lepidosaphes gloverii (Packard, 1869)
• Lepidosaphes granati Koroneos, 1934
• Lepidosaphes newsteadi (Sulc, 1895)
• Lepidosaphes pinnaeformis (Bouché, 1851)
• Lepidosaphes ulmi (Linnaeus, 1758)
• Leucaspis loewi (Colvée, 1882)
• Leucaspis pini (Hartig, 1839)
• Leucaspis pusilla (Loew, 1883)
• Leucaspis riccae Targioni Tozzetti, 1881
• Lindingaspis rossi (Maskell, 1891)
• Melanaspis inopinata (Leonardi, 1913)
• Mercetaspis sphaerocarpae Gomez Menor, 1927
• Nuculaspis abietis (Schrank, 1776)
• Pallulaspis retamae (Hall, 1926)
• Parlatoria camelliae (Comstock, 1883)
• Parlatoria oleae (Colvée, 1880)
• Parlatoria pergandii (Comstock, 1881)
• Parlatoria ziziphi (Lucas, 1853)
• Pinnaspis aspidistrae (Signoret, 1869)
• Pinnaspis strachani (Cooley, 1899)
• Pseudaulacaspis cockerelli (Cooley, 1897)
• Pseudaulacaspis pentagona (Targioni Tozzetti, 1886)
• Quadraspidiotus cecconii (Leonardi, 1908)
• Quadraspidiotus lenticularis (Lindinger, 1912)
• Quadraspidiotus ostraeformis (Curtis, 1843)
• Diaspidiotus perniciosus (Comstock, 1881)
• Quadraspidiotus zonatus (Frauenfeld, 1868)
• Rungaspis capparidis (Bodenheimer, 1929)
• Saharaspis ceardi (Balachowsky, 1928)
• Suturaspis archangelskyae (Lindinger, 1929)
• Targionia nigra (Signoret, 1870)
• Targionia vitis (Signoret, 1876)
• Unaspis euonymi (Comstock, 1881)

Note e riferimenti

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Vedi anche

Articoli Correlati

• Malattie dei bonsai
• Fitopatologia
• Specie invasive

link esterno

• (it) "  ScaleNet: Scale Insects (Coccoidea) Database  " , su www.sel.barc.usda.gov (consultato il 29 maggio 2021 ) .,
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Bibliografia

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• Georges Roque, La Cochenille, dalla tintura alla pittura. Una storia materiale del colore , Gallimard,2021( ISBN  2072852315 ).